区带电泳

是在支持物上，在电场作用下，在均一的缓冲液体系，样品中带正或负电荷的离子分别向负或正极以不同速度移动，分离成一个个彼此隔开的区带。这是当前应用电泳技术。区带电泳按支持物的物理性状不同，又可分为纸和其他纤维膜电泳、淀粉电泳、凝胶电泳。

等电点聚焦电泳

凝胶中加入两性电解质，在电场强度下形成PH梯度。样品在电泳中，环境PH大于其PI时带负电荷，向正极移动，环境的PH小于其PI时带正电荷，向负极移动，当泳动到其自身特有的等电点时，其净电荷为0，泳动速度下降到0，具有不同等电点的物质聚在各自等电点位置，形成一个个清晰的区带，分辨率较高。

电泳技术方法

 

电泳种类很多，电泳的原理基本相同，但不同的支持物或凝胶又有各自的特点。

1 纸电泳

2 薄层电泳

3 薄膜电泳

4 琼脂糖凝胶电泳



6 毛细管电泳

薄膜电泳

以醋酸纤维制成的薄膜作为支撑体的电泳称为薄膜电泳。  将之溶于等有机溶剂中，即可涂布成均一细密的微孔薄膜， 厚度约以0.1-0.15mm为宜。 醋酸纤维素薄膜与滤纸相比较，有以下优点：

1.分离效果好。对蛋白质样品吸附极少，无拖尾现象，染色后背景能完全脱色，各种蛋白质染色带分离清晰，因而提高了定量测定的精 确性。

2.省时。由于亲水性较滤纸小，电渗作用小，电泳时大部分电流是由样品传导的，所以分离速度快，电泳时间短，一般电泳45-60min即可，加上染色、脱色，整个电泳完成仅需90min左右。

3.灵敏度高，样品用量少。血清蛋白电泳仅需2μL血清，故常用于检测微量异常蛋白的改变。

4.应用面广。某些蛋白在纸上电泳不易分离，如胎儿甲种球蛋白、溶菌酶、组蛋 白等用纤维素薄膜电泳能较好地分离。

5.易保存，易定量。纤维素薄膜电泳染色后，经冰乙酸、混合液或其他溶液浸泡 后可制成透明的干板，有利于扫描定量及长期保存。

由于纤维素薄膜电泳操作简单、价廉。目前已广泛用于分析检测血清蛋白、血红蛋白、糖蛋白、酶、多肽及其他生物大分子。


薄膜电泳

1．仪器： 中低压电源、 DYCP-38C电泳槽 、WD-9404型加样器

2．试剂：

（2）染色液：丽春红S ，；

（3）漂洗液：95%乙醇，冰醋酸 ；

（4）透明液：无水乙醇，冰醋酸。

3、介质：纤维素薄膜，7×9cm等

纤维素薄膜电泳注意事项:

1.粗糙面点样. 1-2μl为宜

2.恒流电泳:电流强度0.4～0.6mA/cm

3.pH8.6 缓冲液（离子强度0.06）

4.染色5min即可

5.固定保存：将干燥的电泳图谱膜条放入透明液中浸泡10–15分钟后，取出贴于洁净玻璃板上，干燥后，即为透明薄膜图谱。